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Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―Β―
CRISPRi
ββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββ
top
CRISPRi (von CRISPR interference) ist eine biochemische Methode zur Hemmung einer bestimmten Transkription, die eine Genexpression des blockierten Gens hemmt (Gen-Knockdown).cite-ref-1[1]
Contents
β’ Eigenschaften
β’ Einzelnachweise
ββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββββ
Eigenschaften
CRISPRi basiert β wie auch die CRISPR/Cas-Methode und CRISPRa β auf einem antiviralen Abwehrmechanismus in Bakterien, dem CRISPR.cite-ref-2[2] CRISPRi verwendet einen RNA-Proteinkomplex, der an eine DNA-Sequenz binden kann und dort die Genexpression gewΓΌnschter Geneinhibieren kann. Dabei wird die Eigenschaft von Cas9 mit einer sgRNA genutzt, an eine gewΓΌnschte DNA-Sequenz zu binden.cite-ref-3[3] Da Cas9 mit sgRNA natΓΌrlicherweise auch die gebundene DNA schneidet, wird eine Mutante von Cas9 namens dCas9 (von dead Cas9) verwendet, die keine DNA mehr schneiden kann, weil die Endonukleasefunktion fΓΌr beide DNA-StrΓ€nge durch bestimmte Punktmutationen (D10A und H840A) deaktiviert ist.cite-ref-4[4] In eukaryotischen Zellen wird dCas9 mit einem Kernlokalisierungssignal verwendet, damit dCas9 in den Zellkern importiert wird.cite-ref-pmid23452860-5-0[5] In Bakterien kann CRISPRi sowohl in Gram-negativen E. colicite-ref-pmid23360965-6-0[6]cite-ref-pmid27996021-7-0[7] als auch Gram-positiven B. subtilis verwendet werden.cite-ref-pmid27238023-8-0[8] Durch bakterielle Konjugation kann CRISPRi im Sinne eines horizontalen Gentransfers an andere Bakterien und Bakterienarten weitergegeben werden.cite-ref-pmid25409531-9-0[9] Aufgrund der einfachen modularen Gestaltung der sgRNA eignet sich CRISPRi zum Hochdurchsatz-Screening.cite-ref-pmid24136345-10-0[10] Durch Verwendung mehrerer sgRNA kΓΆnnen parallel mehrere Gene gehemmt werden.
Zur VerstΓ€rkung der Hemmwirkung kann ein Fusionsprotein von dCas9 mit einem Repressor verwendet werden, z. B. mit der ProteindomΓ€ne KrΓΌppel associated box (KRAB).cite-ref-pmid23849981-11-0[11] Weitere Faktoren, welche die Effizienz von CRISPRi beeinflussen, sind die Bindung in der NΓ€he des Startpunktes der Transkription, das Design der sgRNA und zugΓ€ngliche Bereiche im Chromatin.cite-ref-12[12] Durch eine suboptimale Bindung der sgRNA an die DNA-Zielsequenz kΓΆnnen auch geringere Hemmungsquoten erzielt werden.cite-ref-pmid24136345-10-1[10]
Die Notwendigkeit eines Vorhandenseins eines Protospacer Adjacent Motif (PAM) in der zu bindenden DNA begrenzt die Anzahl mΓΆglicher Zielsequenzen.cite-ref-pmid24136345-10-2[10] Chromatinfaltungen und DNA-Modifikationen kΓΆnnten die Bindung des dCas9-sgRNA-Komplexes stΓΆren.cite-ref-pmid24136345-10-3[10] CRISPRi kann auch andere Gene in unmittelbarer Umgebung zur Zielsequenz hemmen, die beispielsweise gespleiΓt werden oder auf dem gegenΓΌberliegenden DNA-Strang liegen. Ebenso kann auch ein bidirektionaler Promotor in beiden Richtungen gehemmt werden.cite-ref-doi10-1093-nar-gkw883-13-0[13]
Eine alternative Methode zur Hemmung einer Genexpression verwendet die RNA-Interferenz. WΓ€hrend CRISPRi die Transkription eines bestimmten Gens hemmt, fΓΌhrt die RNA-Interferenz zu einem Abbau bestimmter RNA-Sequenzen.
Einzelnachweise
cite-note-11. β L. S. Qi, M. H. Larson, L. A. Gilbert, J. A. Doudna, J. S. Weissman, A. P. Arkin, W. A. Lim: Repurposing CRISPR as an RNA-guided platform for sequence-specific control of gene expression. In: Cell. Band 152, Nummer 5, Februar 2013, S. 1173β1183, doi:10.1016/j.cell.2013.02.022, PMID 23452860, PMC 3664290 (freier Volltext).
cite-note-22. β R. Barrangou, C. Fremaux, H. Deveau, M. Richards, P. Boyaval, S. Moineau, D. A. Romero, P. Horvath: CRISPR provides acquired resistance against viruses in prokaryotes. In: Science. Band 315, Nummer 5819, MΓ€rz 2007, S. 1709β1712, doi:10.1126/science.1138140, PMID 17379808.
cite-note-33. β W. Jiang, D. Bikard, D. Cox, F. Zhang, L. A. Marraffini: RNA-guided editing of bacterial genomes using CRISPR-Cas systems. In: Nature Biotechnology. Band 31, Nummer 3, MΓ€rz 2013, S. 233β239, doi:10.1038/nbt.2508, PMID 23360965, PMC 3748948 (freier Volltext).
cite-note-pmid23452860-55. β L. S. Qi, M. H. Larson, L. A. Gilbert, J. A. Doudna, J. S. Weissman, A. P. Arkin, W. A. Lim: Repurposing CRISPR as an RNA-guided platform for sequence-specific control of gene expression. In: Cell. Band 152, Nummer 5, Februar 2013, S. 1173β1183, doi:10.1016/j.cell.2013.02.022, PMID 23452860, PMC 3664290 (freier Volltext).
cite-note-pmid23360965-66. β W. Jiang, D. Bikard, D. Cox, F. Zhang, L. A. Marraffini: RNA-guided editing of bacterial genomes using CRISPR-Cas systems. In: Nature Biotechnology. Band 31, Nummer 3, MΓ€rz 2013, S. 233β239, doi:10.1038/nbt.2508, PMID 23360965, PMC 3748948 (freier Volltext).
cite-note-pmid27996021-77. β X. T. Li, Y. Jun, M. J. Erickstad, S. D. Brown, A. Parks, D. L. Court, S. Jun: tCRISPRi: tunable and reversible, one-step control of gene expression. In: Scientific Reports. Band 6, 12 2016, S. 39076, doi:10.1038/srep39076, PMID 27996021, PMC 5171832 (freier Volltext).
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